具備緩沖作用的緩沖溶液，通常針對溶液中放入一定量的酸和堿，能夠起到防止溶液PH值產(chǎn)生一定變化的良好作用。一般來說，弱酸以及其鹽溶液混合而成的溶液、弱堿與其鹽溶液進行混合的溶液等，都可以被稱為緩沖溶液。能夠產(chǎn)生對酸的緩沖作用，是由于其中的弱酸根離子的原因。如果向該溶液里面滴加定量的強酸物質(zhì)，氫離子勢必要被弱酸根離子消耗完。這樣就能維持PH的固定值，使其不會變化。如果加入適量強堿，溶液里的弱酸會消耗氫氧根離子，從而阻礙PH發(fā)生改變。
普通PCR所用的一對引物中有一個引物加多了，為正常的三倍只要引物特異性比較好，那么不會產(chǎn)生大的影響。如果恰巧是加多的這條引物不是很特異的話，也許會擴出來非特異帶。
培養(yǎng)細胞至對數(shù)生長期，細胞以胰酶消化計數(shù)后，用細胞計數(shù)測出細胞密度，每孔接種 5×104 個細胞，添加細胞培養(yǎng)液至 500μL。通常情況下，該接種量的 H1299 或 293T 細胞在感染后第 3 天可生長至 80%-90% 融合度。（接種目的細胞時，請根據(jù)細胞的實際生長速度調(diào)整接種量，使目的細胞感染后第 3 天生長至 80%-90% 融合度）
與Southern或Northern雜交方法類似，但WesternBlot采用的是聚丙烯酰胺凝膠電泳，被檢測物是蛋白質(zhì)，“探針”是抗體，“顯色”用標記的二抗。經(jīng)過PAGE分離的蛋白質(zhì)樣品，轉(zhuǎn)移到固相載體（例如硝酸纖維素薄膜）上，固相載體以非共價鍵形式吸附蛋白質(zhì)，且能保持電泳分離的多肽類型及其生物學活性不變。以固相載體上的蛋白質(zhì)或多肽作為抗原，與對應的抗體起免疫反應，再與酶或同位素標記的第二抗體起反應，經(jīng)過底物顯色或放射自顯影以檢測電泳分離的特異性目的基因表達的蛋白成分。該技術也廣泛應用于檢測蛋白水平的表達。既可以定性，又可以半定量的Western是初步鑒定蛋白質(zhì)最方便也是最通用的方法。
細菌的芽胞具有厚而致密的壁，透性低，不易著色，若用一般染色法只能使菌體著色而芽胞不著色（芽孢呈無色透明狀）。芽孢染色法就是根據(jù)芽孢既難以染色而一旦染上色后又難以脫色這一特點而設計的。所有的芽孢染色法都基于同一個原則：除了用著色力強的染料外，還需要加熱，以促進芽孢著色。當染芽孢時，菌體也會著色，然后水洗，芽孢染上的顏色難以滲出，而菌體會脫色。然后用對比度強的染料對菌體復染，使菌體和芽孢呈現(xiàn)出不同的顏色，因而能更明顯地襯托出芽孢，便于觀察。
牛血清白蛋白是血液中的主要成分（38g/100ml），分子量68kD，等電點4.8，含氮量16%，含糖量0.08%，僅含已糖和已糖胺，含脂量只有0.2%。白蛋白由581個氨基酸殘基組成，其中35個半胱氨酸組成17個二硫鍵，在肽鏈的第34位有一自由巰基。白蛋白可與多種陽離子、陰離子和其他小分子物質(zhì)結(jié)合。牛血清蛋白溶液可以作為測量蛋白質(zhì)含量的標準曲線用。
注意觀察液滴落點周圍溶液顏色變化。開始時應邊搖邊滴，滴定速度可稍快（每秒3~4滴為宜），但是不要形成水流。接近終點時應改為加一滴，搖幾下，最后，毎加半滴，即搖動錐形瓶，直至溶液出現(xiàn)明顯的顏色變化，準確到達終點為止。
自然界中，質(zhì)粒是在營養(yǎng)充足時出現(xiàn)的，它在結(jié)構(gòu)、大小、復制方式，每個細菌的拷貝數(shù)，在不同的細菌體內(nèi)的繁殖力不同，在菌種之間的轉(zhuǎn)移力等方面都會變化，可能最重要的是質(zhì)粒所攜帶的特征的改變。大多數(shù)原核生物的質(zhì)粒是雙鏈環(huán)狀的DNA分子；但是無論是在革蘭氏陽性還是陰性菌體內(nèi)都可以發(fā)現(xiàn)線狀質(zhì)粒。質(zhì)粒大小變化很大，可從幾個到數(shù)百個kb。
由于貼壁細胞貼壁生長，接觸抑制，長滿一瓶后貼壁較緊，不易取出。這時必須用胰蛋白酶或者膠原蛋白酶處理，使其分散開后取出，然后在放入新的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)。
